CM Słabe jony-Chromatografia z membraną wymienną
SP silna chromatografia kationowymienna z membraną Wprowadzenie produktów 1. Przegląd Silna chromatografia kationowymienna SP to technika oczyszczania, w której grupy kwasu sulfonowego są związane z membraną, tworząc moduł chromatograficzny. Separacja odbywa się na podstawie różnic w...
Wprowadzenie produktów
SP Silna chromatografia membranowa kationowymienna Wprowadzenie produktu
1. Przegląd
Silna chromatografia kationowymienna SP jest techniką oczyszczania, w której grupy kwasu sulfonowego są związane z membraną, tworząc moduł chromatograficzny. Separację osiąga się w oparciu o różnice we właściwościach ładunku i ilości ładunku różnych biomolekuł. Ponieważ większość makrocząsteczek biologicznych zawiera grupy karboksylowe lub hydroksylowe, ich właściwości ładunkowe i ilości można zmieniać dostosowując wartość pH roztworu buforowego. Gdy biomolekuły zwiążą się z modułami membranowymi niosącymi przeciwne ładunki, siła jonowa lub pH fazy ruchomej ulega zmianie, aby najpierw wymyć składniki słabo związane, a następnie składniki silnie związane, uzyskując w ten sposób skuteczną separację.

2. Zalety produktu
Szybko i wydajnie. Wysoką zdolność wiązania można osiągnąć przy natężeniu przepływu do 40 razy większym niż w przypadku tradycyjnej chromatografii na żywicy. W porównaniu z konwencjonalną chromatografią-na bazie żywicy, czas procesu przy użyciu chromatografii membranowej można skrócić 30–40 razy. Typowe robocze natężenie przepływu wynosi około 10 MV/min.
2.2 Wysoka skuteczność wiązania Chromatografia membranowa wykazuje wysoką zdolność wiązania i duże szybkości przepływu przy niskim spadku ciśnienia, umożliwiając wychwycenie naładowanych biomolekuł podczas jednego przejścia przez moduł.
2.3 Skalowalność i elastyczność Pełna gama produktów do chromatografii membranowej może zaspokoić różnorodne potrzeby oczyszczania biomolekuł, obejmując zastosowania od opracowania procesu po produkcję-na dużą skalę. Konstrukcja kapsułki pozwala na jednorazowe-użycie lub może zostać wyczyszczona i ponownie użyta po odpowiednich procedurach czyszczenia.
2.4 Zwiększona produktywność Kompaktowa konstrukcja minimalizuje powierzchnię zajmowaną przez obiekt. Eliminując operacje takie jak pakowanie kolumny, czyszczenie, walidacja czyszczenia i przechowywanie kolumny, przetwarzanie można rozpocząć po prostym zrównoważeniu ze stosunkowo mniejszą ilością buforu. Ponieważ nie ma potrzeby pakowania, czyszczenia ani przechowywania kolumny, koszty pracy można obniżyć o ponad 50%.


3 Parametry techniczne
3.1 Materiały konstrukcyjne
|
Skala laboratoryjna |
mała skala |
skala pilotażowa |
skala produkcji |
|
|
objętość membrany |
0,2 ml |
5ml |
140ml |
5L |
|
Struktura wspierająca membranę |
Polipropylen |
|||
|
obudowa membrany |
Polipropylen |
|||
|
O-pierścień |
Silikon |
|||
3.2 Charakterystyka robocza
|
Skala laboratoryjna |
mała skala |
skala pilotażowa |
skala produkcji |
|
|
objętość membrany |
0,2 ml |
5ml |
400ml |
5L |
|
Zalecane natężenie przepływu |
1-6ml/min |
25-150ml/min |
2-12 l/min |
25-150 l/min |
|
Maksymalna temperatura robocza |
35 stopni |
|||
|
Maksymalne ciśnienie robocze |
3 bary (25 stopni) |
|||
|
Maksymalna różnica ciśnień |
3 bary (25 stopni) |
|||
|
Warunki przechowywania |
20% etanoladziwnesrozwiązanie |
|||
Porównanie pokazuje, że żywotność chromatografii membranowej SP jest porównywalna z żywotnością SP Sepharose 6FF.

Rycina 1. Zmiany zdolności wiązania chromatografii membranowej SP po wielokrotnych zastosowaniach testowanych z lizozymem
Ponadto oceniliśmy chromatografię membranową pod kątem jej skuteczności w usuwaniu białek i kwasów nukleinowych komórek gospodarza. Wyniki są następujące:
|
|
DNA |
pracownik służby zdrowia |
|||||
|
|
Odzyskiwanie IgG |
Zawartość (pg/mg IgG) metodą RT PCR |
Czynnik usuwania |
Zawartość (ng/mg IgG) według Elisy |
Czynnik usuwania |
||
|
Uruchomić |
% |
Przed membraną Q |
Po membranie Q |
Dziennik |
Przed membraną Q |
Po membranie Q |
Dziennik |
|
1 |
96.4 |
423 |
3.6 |
2.07 |
7 |
4.3 |
0.21 |
|
2 |
97.4 |
438 |
4.3 |
2.01 |
7 |
4.7 |
0.17 |
|
3 |
94.1 |
513 |
5.8 |
1.95 |
6 |
2.3 |
0.42 |
|
4 |
96.2 |
32 |
0.8 |
1.60 |
6 |
3.2 |
0.27 |
|
5 |
96.3 |
45 |
1.9 |
1.37 |
8 |
3.4 |
0.37 |
|
6 |
96.7 |
158 |
2.4 |
1.82 |
8 |
3.5 |
0.36 |
|
7 |
96.4 |
267 |
2.6 |
2.01 |
9 |
6 |
0.18 |
|
8 |
96.8 |
298 |
3.6 |
1.92 |
9 |
7 |
0.11 |
|
9 |
97.9 |
746 |
9.8 |
1.88 |
4 |
1.5 |
0.43 |
|
10 |
96.2 |
39 |
3.2 |
1.09 |
4 |
1.4 |
0.46 |
Tabela 1. Szybkość usuwania DNA i białek komórek gospodarza w materiale IgG wykazującym ekspresję-CHO przy użyciu chromatografii membranowej SP
Seria eksperymentów wykazała, że chromatografia membranowa SP może skutecznie usuwać zanieczyszczenia przy jednoczesnym utrzymaniu wysokiego stopnia odzysku docelowej IgG.
Porównując chromatografię membranową Gudiling SP z importowanymi markami, dane dotyczące zdolności wiązania są następujące:
|
Wiążącycpojemność (mg/ml) |
Sartoriusa |
CAŁUN |
Prowadzenie |
|
Lizozym |
25 |
32 |
29 |
|
Trypsyna |
22 |
27 |
25 |
Tabela 2. Wydajność wiązania różnych białek naszych produktów i marek konkurencyjnych
Ogólna ocena pokazuje, że nasza zdolność wiążąca jest porównywalna z zdolnością produktów importowanych.

Rycina 2. Test zdolności wiązania modułu chromatografii membranowej SP z użyciem lizozymu jako standardu
W porównaniu z dynamiczną zdolnością wiązania i produktami importowanymi potwierdzono, że większość białek docelowych można wychwycić, gdy lizozym eluuje się 190 mM NaCl.
Dzięki różnym warunkom elucji odkryliśmy, że profile elucji chromatografii membranowej są podobne do profili elucji na żelu agarozowym, ale czystość białek różni się znacznie przy różnych stężeniach soli. W rzeczywistych pracach badawczo-rozwojowych i produkcyjnych konieczne jest ilościowe określenie optymalnych warunków elucji, aby uzyskać białka docelowe o wysokiej-czystości.
4 Typowe przypadki zastosowań
Usuwanie DNA, wirusów i białek komórek gospodarza
Wychwytywanie plazmidów, wirusów, białek i oczyszczanie oligonukleotydów
Usuwanie pigmentów z drożdżowego bulionu fermentacyjnego i-wychwytywanie białek o dużej wydajności
5 Procedura użytkowania
5.1 Przygotowanie i montaż sprzętu:
5.1.1:Zainstaluj moduł chromatografii membranowej w systemie chromatograficznym ĘKTA, postępując zgodnie z procedurami podobnymi do kolumn z żywicą, upewniając się, że kierunek przepływu jest zgodny ze strzałkami modułu i orientacją wlotu. Podłącz moduł za pomocą zamków typu Luer lub złączek-, aby zapewnić bezpieczną integrację z systemem.
5.1.2 Ustawić natężenie przepływu zasilania na5–10 MV/mini odgazuj moduł przy użyciu buforu równoważącego, upewniając się, że wyciek jest wolny od pęcherzyków powietrza. Po odgazowaniu podłączyć wylot permeatu do układu chromatograficznego.
5.2:Obróbka-przed użyciem:
5.2.1:
Ustaw natężenie przepływu zasilania na5–10 MV/mini wykonaj-obróbkę wstępną0,5 M NaOH przez ponad 5 MVzapewniając, że membrana osiągnie pełną równowagę.
5.2.2: Przy tym samym natężeniu przepływu wykonaj-obróbkę wstępną za pomocą1 M NaCl dla ponad 5 MVaby zapewnić osiągnięcie przez membranę pełnej równowagi.
5.3 Proces chromatograficzny
5.3.1 Ustawić natężenie przepływu zasilania na 5–10 MV/min i zrównoważyć membranę buforem równoważącym pod napięciem większym niż 5 MV, aż membrana osiągnie pełną równowagę.
5.3.2 Po-filtracji wstępnej 0,22 μm, nałóż próbkę na membranę, aż do zakończenia ładowania próbki lub osiągnięcia chromatograficznej zdolności wiązania.
5.3.3 Przemyć buforem równoważącym przez ponad 10 MV, aż sygnał UV powróci do linii podstawowej.
5.3.4 Zastosuj elucję gradientową lub stopniową zgodnie z projektem procesu i zbierz frakcje zgodnie z wymaganiami.
5.4 CIP po-obróbce po użyciu – urządzenie do chromatografii membranowej CIP (czyszczenie na miejscu)
5.4.1 Ustawić natężenie przepływu zasilania na 5–10 MV/min i przeprowadzić czyszczenie 1 M NaOH przez ponad 10 MV, aż sygnał UV spadnie poniżej linii bazowej.
5.4.2 Po 30 minutach cyrkulacji przełączyć na mycie wodą, aż pH osiągnie 7–8, następnie kontynuować czyszczenie 20% etanolem, aż przewodność stanie się prawie stała.
5.5 Przechowywanie chromatografii membranowej
Po użyciu i zakończeniu procesu CIP moduł membranowy można wyjąć i przechowywać poprzez namoczenie w 20% etanolu lub można go przechowywać-w linii w temperaturze pokojowej w roztworze zawierającym 20% etanolu. Należy okresowo sprawdzać i wymieniać 20% roztwór etanolu.
6. Informacje dotyczące zamówienia
Q Silny filtr kapsułkowy do chromatografii z membraną anionowymienną
|
Skala laboratoryjna |
mała skala |
skala pilotażowa |
skala produkcji |
|
|
Model produktu |
IEXQ0002ES |
IEXQ0050ES |
IEXQ0400ES |
IEXQ5000ES |
|
Objętość membrany |
0,2 ml |
5ml |
400ml |
5L |
Popularne Tagi: cm słabych jonów-chromatografia membranowa do wymiany, Chiny, dostawcy, producenci, fabryki, hurtownia, luzem, w magazynie, bezpłatna próbka
Może ci się spodobać również
Wyślij zapytanie












